| 適用范圍 | 試劑 |
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| 使用方法 | 【適用儀器】 顯微鏡、二氧化碳細胞培養箱、離心機。 【樣本要求】 新鮮骨髓穿刺液效果最佳，若樣本無法立即接種，將樣本放于2℃-8℃保存，并于3天內接種，超過3天將影響培養效果。 【檢驗方法】 1. 接種：每5ml或10ml培養基中加入0.2-0.8ml的骨髓穿刺液樣本，輕輕搖晃培養瓶使樣本與培養基充分混合。 2. 培養：置于37℃，5%CO2培養箱中培養24-48小時。 3. 終止培養：向每個培養瓶中加入秋水仙素溶液，始終濃度為0.05-0.1μg/ml，輕輕搖勻后，放入培養中靜置1-2小時。 4. 收獲細胞：將培養液轉移至離心管中，1500rpm離心10分鐘。 5. 低滲：棄去上清液，加入37℃預溫的0.075 mol/L的KCl低滲液8-10ml，混勻使細胞重新懸浮，37℃孵化25-35分鐘。 6. 預固定：以冰醋酸：甲醇=1：3的比例配置固定液。每個離心管中加入1-2ml的固定液，充分混勻后1500rpm離心10分鐘。 7. 固定：棄去上清，每個離心管中加入8ml的固定液，充分混勻后靜置20-30分鐘，隨后1500rpm離心10分鐘。 8. 再次固定：棄去上清，每個離心管中加入8ml的固定液，充分混勻后靜置10分鐘，隨后1500rpm離心10分鐘。并重復該步驟一次。 9. 制片：將固定后的細胞懸液調至合適的濃度滴于用冰水預冷的載玻片上，每張載玻片上滴2-3滴，可通過酒精燈外延5-6秒或者用口輕輕吹散。放入80℃烤箱中烤片2~3小時，或50℃過夜烤片。 10. 染色體分帶：玻片從烤箱中取出，室溫冷卻后可進行G顯帶和R顯帶分型，吉姆薩染液染色后顯微鏡下觀察進行染色體核型分析。 【陽性判斷值或者參考區間】 細胞倍增指數大于2 【檢驗結果的解釋】 1. 固定液每次使用必須新鮮配制，否則將會形成酯類，形成背景較為明顯，從而影響制片效果； 2. 當遇到經過多次放療、化療和藥物治療的病人，重復兩次標本都缺乏有絲分裂相，可能是病人本身原因造成的。 3. 細胞培養時間、加入秋水仙酰胺的量以及低滲操作時間會影響樣品制備效果，需要根據實際樣本及實驗條件進行適當調整。 【檢驗方法的局限性】 僅用于培養骨髓細胞。 |
| 注意事項 | 1. 細胞密度以2×106/ml左右為宜。 2. 短期內可放4-8℃保存，若長期儲存，應放-10℃至-20℃保存，不可反復凍融。 3. 本產品只用于體外診斷，操作過程應避免污染；操作人員在檢驗時應做好防護，預防疾病傳播。 4. 試劑包裝如有破損或滴漏，嚴禁使用。 5. 溶液應為澄清，如有沉淀物，嚴禁使用。 6. 禁止使用超出規定有效期的產品。 |
| 聲明 | 僅用于科研使用，不能用于臨床診斷和治療。 |
| 保存條件 | 培養基應在-20℃避光儲存，有效期為24個月。 |
